肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)
Mini Samples ELISA Kit for Myostatin (MSTN)
GDF8; Growth Differentiation Factor 8
- 编号MEB653Ra
- 物种Rattus norvegicus (Rat，大鼠)相同的名称，不同的物种。
- 实验方法竞争抑制
- 反应时长3h
- 检测范围1.23-100ng/mL
- 灵敏度最小可检测剂量小于等于0.51ng/mL.
- 样本类型serum, plasma, tissue homogenates, cell lysates, cell culture supernates and other biological fluids
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- 规格48T96T96T*596T*1096T*100
- 价格¥ 4536¥ 6480¥ 29160¥ 55080¥ 453600
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特异性
本试剂盒用于检测肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)，经检测与其它相似物质无明显交叉反应。
由于受到技术及样本来源的限制，不可能完成对所有相关或相似物质交叉反应检测，因此本试剂盒有可能与未经检测的其它物质有交叉反应。
回收率
分别于定值血清及血浆样本中加入一定量的肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)（加标样品），重复测定并计算其均值，回收率为测定值与理论值的比率。
| 样本 | 回收率范围(%) | 平均回收率(%) |
| serum(n=5) | 83-101 | 86 |
| EDTA plasma(n=5) | 80-95 | 90 |
| heparin plasma(n=5) | 99-105 | 102 |
精密度
精密度用样品测定值的变异系数CV表示。CV(%) = SD/mean×100
批内差：取同批次试剂盒对低、中、高值定值样本进行定量检测,每份样本连续测定20 次，分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批间差：选取3个不同批次的试剂盒分别对低、中、高值定值样本进行定量测定，每个样本使用同一试剂盒重复测定8次，分别计算不同浓度样本的平均值及SD值。
批内差： CV<10%
批间差： CV<12%
线性
在定值血清及血浆样本内加入适量的肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)，并倍比稀释成1:2，1:4，1:8，1:16的待测样本，线性范围即为稀释后样本中肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)含量的测定值与理论值的比率。
| 样本 | 1:2 | 1:4 | 1:8 | 1:16 |
| serum(n=5) | 85-96% | 95-103% | 97-104% | 93-101% |
| EDTA plasma(n=5) | 91-104% | 82-97% | 97-104% | 85-94% |
| heparin plasma(n=5) | 88-104% | 89-102% | 91-99% | 89-98% |
稳定性
经测定，试剂盒在有效期内按推荐温度保存，其活性降低率小于5%。
为减小外部因素对试剂盒破坏前后检测值的影响，实验室的环境条件需尽量保持一致，尤其是实验室内温度、湿度及温育条件。其次由同一实验员来进行操作可减少人为误差。
实验流程
1. 实验前标准品、试剂及样本的准备；
2. 加样（标准品及样本）25µL后，立即加入检测溶液A25µL，
37°C孵育1小时；
3. 甩干，洗板3次；
4. 加检测溶液B50µL，37°C孵育30分钟；
5. 洗板5次；
6. 加TMB底物50µL，37°C孵育10－20分钟；
7. 加终止液25µL，立即450nm读数。
实验原理
本试剂盒应用竞争抑制酶联免疫分析法测定标本中待测物质水平。将肌肉生长抑制素(MSTN)检测试剂盒(酶联免疫吸附试验法,小样本)单克隆抗体包被微孔板，制成固相载体，往包被抗体的微孔中同时加入生物素标记的抗原和待测抗原(标准品或样本)，待测抗原与生物素标记抗原对特异性抗体进行竞争结合。温育后经洗涤去掉未结合物，然后加入HRP标记的亲和素，经过温育和彻底洗涤后加入底物TMB显色。TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。待测标本浓度越高，标记抗原和抗体的结合就越受到抑制，显色愈浅。显色的深浅与酶量呈正相关，而与样品中待测物质含量呈负相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（O.D.值），计算样品浓度。
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参考文献
| 杂志 | 参考文献 |
| Clinical Medicine and Diagnostics | Anti-Myostatin Reduces Bone Mineral Loss in Ovariectomized Rats[Sapub:Source] |
| Nutr Metab (Lond) | Short-term, high-fat diet accelerates disuse atrophy and protein degradation in a muscle-specific manner in mice[PubMed: 26539241] |
| International Journal of Cancer | Tumor inoculation site affects the development of cancer cachexia and muscle wasting[PubMed: 26016447] |
| Connect Tissue Res | Induction of transient tenogenic phenotype of high density cultured human dermal fibroblasts[PubMed: 25748814] |
| PLoS One | Higher Plasma Myostatin Levels in Cor Pulmonale Secondary to Chronic Obstructive Pulmonary Disease[Pubmed:26998756] |
| Calcif Tissue Int. | The Effect of Vibration Treatments Combined with Teriparatide or Strontium Ranelate on Bone Healing and Muscle in Ovariectomized Rats[Pubmed:27272029] |
| Archives of medical research | Irisin and Myostatin Levels in Patients with Graves' Disease.[pubmed:27986127] |
| Calcified Tissue International | Effect of Strontium Ranelate on the Muscle and Vertebrae of Ovariectomized Rats[pubmed:29242963] |
| Scientific Reports | Compensatory anabolic signaling in the sarcopenia of experimental chronic arthritis.[pubmed:28740214] |
| Journal of Animal Science | Fermented corn-soybean meal elevated IGF1 levels in grower-finisher pigs[Pubmed: 30203098] |
| European Journal of Internal Medicine | Predictive value of serum myostatin for the severity and clinical outcome of heart failure[Pubmed: 31056368] |
| J Cell Physiol | Resistance training‐induced muscle hypertrophy is mediated by TGF‐β1‐Smad signaling pathway in male Wistar rats[Pubmed: 31960436] |
| NEPHROLOGY DIALYSIS TRANSPLANTATION | Myostatin and muscle atrophy during chronic kidney disease[Pubmed: 32974666] |
| Oxid Med Cell Longev | Gender-Specific Behaviour in Obesity Stages I-II: Imbalance of Aminothiol Status and Adipomyokine Profile in Subjects with Different Insulin Resistance …[34868459] |
